Primer registro de diplostomiasis ocular en trucha arco iris cultivada en Patagonia (Argentina) (página 2)

Material y métodos

El establecimiento afectado está ubicado en la
localidad de Río Senguer (45°10’S,
71°20’W) en la provincia de Chubut. Se caracteriza por
ser una piscicultura con estanques en tierra,
ubicados en Rosario y alimentados por agua que
ingresa desde un canal de derivación del Río
Senguer.

En mayo de 1995, ante la presencia en proporciones
epidémicas de juveniles de trucha arco iris con ojos
blanquecinos (figura 1) y sin mortalidad, se solicitó a la
piscicultura el envío al laboratorio de
ejemplares sacrificados al efecto, agregando en un recipiente
separado caracoles vivos extraídos de los estanques. El
material, colocado en una conservadora con enfriadores, fue
enviado por transporte
terrestre y tardó 48 horas en arribar al laboratorio. Los
26 ejemplares del gasterópodo Chilina dombeiana llegaron
muertos y los 10 ejemplares de O. mykiss presentaron distinto
grado de descomposición de la musculatura y las
vísceras.
Todo el material fue analizado inmediatamente. Los caracoles se
examinaron por técnica de aplastamiento y los peces por
necropsia. Se realizó microdisección de ojos para
extracción y contaje de las metacercarias presentes. Las
metacercarias recuperadas fueron conservadas en alcohol 70%,
teñidas con carmín clorhídrico e
identificadas según Schell (1970).

Resultados y
discusión

El 7.7% de los 26 caracoles examinados (long.: 1.25 a
3.43 cm; ancho: 0.37 a 2.59 cm) estaban parasitados en el
hepatopáncreas con esporocistos de Diplostomidae. El 100%
de los peces (long. total: 12.8 a 16.2 cm) estaban parasitados
uni o bilateralmente con metacercarias en el cristalino, con una
presentación de 5 a 20 parásitos por ojo. No se
registró ningún otro parásito durante la
necropsia, aunque el estado de
conservación de los ejemplares no permitió un
examen exhaustivo.

Figura 1. Ejemplares
de trucha arco iris parasitados con enturbiamiento evidente del
cristalino.
Parasited rainbow trout specimens with evident opacity of
crystalline lens.

El análisis taxonómico de las
metacercarias indicó que pertenecían al género
Diplostomum sp. por la ausencia de quiste, la forma alargada del
cuerpo dividida en 2 regiones, ventosa posterior mayor que la
anterior, órgano tribocítico bulboso y 2
pseudoventosas laterales. La infección fue de carácter primario y crónico, no
registrándose infección secundaria por hongos ni
protozoos. La
presencia de este parásito permitió confirmar el
diagnóstico presuntivo de catarata
verminosa o diplostomiasis ocular.

El estado de
conservación del material no permitió realizar
estudios taxonómicos a nivel de especie ni estudios
histológicos destinados a establecer el daño
del ojo y eventualmente de otros órganos.

Las cataratas en peces se producen principalmente por
desbalance de nutrientes, exposición
excesiva a la luz solar o
invasión de parásitos (Dukes, 1975; Ferguson,
1989). Sin embargo un examen adecuado del cristalino es
suficiente para reconocer la catarata de origen parasitario
(Ghittino, 1975). El enturbiamiento del ojo con aspecto
blanquecino, en forma uni o bilateral y el cultivo en estanques
constituyen las características en común que
presentan este caso y otros de diplostomiasis ocular descriptos
en peces de cría (Roberts y Sheperd, 1974; Ghittino, 1975;
Conroy y col., 1985; Inchausty y Heckmann, 1997). La cantidad de
metacercarias encontrada por ojo no fue la suficiente para
provocar ceguera. Esta solamente aparece cuando el número
de metacercarias es elevado, por encima de 40 y depende del
tamaño del pez (Evans y col., 1976). Bajo estas
condiciones pierden la eficiencia para
alimentarse, produciéndose un retraso en el crecimiento,
pérdida de peso y mortalidad directa por hambruna o
indirecta por aumento de la vulnerabilidad a la
depredación (Kennedy, 1974; Ghittino, 1975; Evans y col.,
1976; Palmieri y col., 1976a, b).

Trabajos experimentales han demostrado que hay
susceptibilidad diferencial, relacionada con mecanismos de
inmunidad humoral y celular, a la infección con D.
spathaceum en distintos salmónidos, en una gradiente
creciente se ubicarían S. trutta, S. clarki (cutthroat
trout), S. fontinalis, O. mykiss y O. kisutch (salmón
coho) (Post, 1983; Speed y Pauley, 1985; Whyte y col., 1987;
Höglund y Thuvander, 1990). Esta característica
podría ser utilizada como una herramienta útil para
el manejo tanto de poblaciones silvestres como cultivadas (Speed
y Pauley, 1984).

El ciclo de vida
de los diplostómidos en la Patagonia
argentina tendría como primer hospedador intermediario a
Chilina dombeiana (Quaggiotto y Valverde, 1995). Los valores de
prevalencia encontrados en los caracoles (7.7%) son
próximos a los encontrados para Lymnaea spp. infestada por
D. spathaceum (5.7 al 6.5%) en ambientes naturales en Utah
(Palmieri y col., 1976 a, b), aunque el número de
ejemplares examinado en este caso fue mayor. Este caracol se
caracteriza por desplazarse sobre fondos limosos,
enterrándose en invierno y se alimenta ramoneando sobre
diatomeas epilíticas de pequeño tamaño como
Achnantes lanceolata y Synedra tabulata (Castellanos y Gaillard,
1981; Gagliotti, 1993). El hospedador definitivo aún no se
ha identificado, aunque se cita la presencia del
diplostómido D. minutum en Larus dominicanus (Szidat,
1964; Kreiter y Semenas, 1997), cuyos movimientos en grandes
áreas y su régimen dietario variado
permitirían el cierre de éste y otros ciclos
parásitos de importancia epizootiológica (Kulisic y
col., 1995; Kreiter y Semenas, 1997). Distintas especies de
aves
ictiófagas pueden funcionar como hospedadores definitivos,
pero los miembros de la familia
Laridae son los más frecuentemente implicados en el ciclo
de Diplostomum (Ghittino, 1975, 1976; Chapell y col., 1994;
Inchausty y Heckmann, 1997), al menos en América
del Norte y en Europa.

Para el control de esta
enfermedad se utilizan fundamentalmente métodos
ecológicos basados en un adecuado conocimiento
de la biología de los parásitos y de su
relación con los hospedadores (Chapell y col., 1994). Las
infecciones se deben principalmente a la existencia de vegetación, que facilita la presencia de
caracoles; a la temperatura
del agua, que condiciona la emergencia de cercarias y a la
presencia de aves ictiófagas adecuadas, que permiten el
cierre del ciclo (Palmieri y col., 1976a, b; Heckmann, 1995;
Paperna, 1995). La interrupción de éste a
través de la eliminación de los caracoles, la
disminución de las cercarias y el alejamiento de las aves
ictiófagas se consideran fundamentales para la
prevención y el control de la enfermedad (Evans y col.,
1976; Ghittino, 1975, 1976; Field e Irwin, 1994; Heckmann, 1995).
Por lo tanto, las recomendaciones para este caso
fueron:

• Eliminación de todos los animales
  afectados.
• Vaciamiento y secado de los canales de cría
  para eliminar la población de caracoles.
• Remoción del fondo de los canales de restos de
  alimento balanceado y heces de los peces que favorecen el
  crecimiento de algas que sirven de alimento a los
  caracoles.
• Colocación de un filtro de malla adecuada en
  la toma de agua para impedir el ingreso de caracoles,
  considerando que su tamaño más pequeño es
  de 0.5 mm.
• Colocación de una red sobre los canales
  para impedir el acceso de aves.
• Aumento del caudal para facilitar el arrastre tanto
  de caracoles pequeños como de estadíos larvales,
  especialmente desde fines de primavera y hasta principios de
  otoño.

Se han probado controles biológicos con el
microsporídeo Nosema strigeoideae que ataca selectivamente
los esporocistos y las cercarias de D. spathaceum en el caracol
(Palmieri y col., 1976a) y medicamentosos, utilizando las
propiedades terapéuticas y profilácticas sobre las
metacercarias de esta especie parásita de un derivado de
isoquinoleína-piracina, administrado con la comida (Bylund
y Sumari, 1981) o en baños (Szekely y Molnar, 1991). Este
tipo de controles deberían incorporarse cuando los
métodos ecológicos no funcionan, pero son
difíciles de instaurar en cuerpos de agua muy grandes
(Bylund y Sumari, 1981; Heckmann, 1995) donde se usan otras
metodologías, como la aplicación de rotenona, un
pesticida que tiene propiedades tóxicas sobre peces e
invertebrados acuáticos controlando de este modo la
prevalencia e intensidad de la enfermedad (Inchausty y Heckmann,
1997).

Los registros en
Argentina (Ortubay y col., 1994) indican que la diplostomiasis se
extiende en ambientes naturales desde los 39°46’ S
(Lago Huechulafquén) hasta los 54°25’ S (Lago
Yehuín). Esta distribución se superpone en parte con la
de sus probables hospedadores, C. dombeiana que se encuentra en
zonas templadas y templado frías de América del Sur
(Castellanos y Miquel, 1991) y L. dominicanus que se distribuye
desde el sur de Brasil y
Perú hasta el Archipiélago Antártico. La presencia de Diplostomum es
en general común a todos los peces que habitan un mismo
cuerpo de agua y de las 24 especies de peces citadas para
Patagonia (Ortubay y col., 1994), hay registros de diplostomiasis
en 9 de ellas. Los más frecuentes corresponden a trucha
arco iris, entre las especies introducidas y al puye grande,
entre las autóctonas. Todo esto sugiere que están
dadas las condiciones en los ambientes naturales para que el
ciclo se cumpla y, por ende, para que el mismo pueda darse cuando
se realizan cultivos de peces en jaulas.

Este trabajo
constituye la primera cita de diplostomiasis ocular en peces de
cultivo de la Patagonia argentina y extiende la
distribución conocida de esta enfermedad en trucha arco
iris hasta el sur de Argentina.

AGRADECIMIENTOS

A Giorgio Georgetti por facilitar bibliografía y a
Víctor Báez por la toma de fotografías en la
piscicultura.

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